临床上经常送检的标本有

临床上经常送检的标本有分泌物、呕吐物、排泄物、血液、脱落细胞、体液等。临床是指直接接触病人，对病人进行实际的观察。如内科学、外科学、妇产科学、儿科学等学科属于临床医学。从医院内部分工来说，则分为临床、医技、行政、工勤等部门。临床科室是医院的主体，它直接担负着对病人的收治、诊断、治疗等任务；临床人员包括直接参与治疗、护理病人的医生、护士；医技科室即过去所说的非临床科室，它也有医生和护士，但是不直接参与对病人的治疗和护理，只是为临床诊断、治疗直接提供服务。

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医学检验常用标本采集有哪些(2)

　　五、便标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.评估患者的病情、治疗、排便情况及配合程度。

　　2.了解女性患者是否在月经期。

　　(二)操作要点。

　　1.自然排便采集法：自然排便后，留取便标本。

　　2.无法排便者：将肛拭子前端用甘油或生理盐水湿润，插入4～125px(幼儿2～75px)处，轻轻在直肠内旋转，沾取直肠内粘液后取出，置于容器内。

　　3.采集标本时，应选取部分或含有黏液、脓血等部分。

　　4.检查蛲虫卵：取透明薄膜纸于夜晚12点左右或清晨排便前由口周围拭取，立即镜检。

　　5.找寄生虫体或虫卵计数：采集24h便。

　　6.便隐血试验：检查前3天内禁食肉类、肝类、血类食物，并禁服铁剂，按要求采集标本。

　　7.检查阿米巴原虫，应在采集前将容器用热水加温，便后连同容器立即送检。

　　8.服驱虫剂或做血吸虫孵化检查时，应留取全部粪便及时送检。

　　(三)指导要点。

　　1.告知患者正确留取标本对检验结果的重要性。

　　2.告知患者粪便标本留取的方法及注意事项。

　　(四)注意事项。

　　1.灌肠后的粪便、粪便过稀及混有油滴等不宜作为检查标本。

　　2.便标本应新鲜，不可混入尿液及其他杂物。

　　六、呼吸道标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.评估患者的年龄、病情、治疗、排痰情况及配合程度。

　　2.评估患者口腔黏膜有无异常。

　　3.观察痰液的颜色、性质、量、分层、气味、粘稠度和有无肉眼可见的异常物质等。

　　(二)操作要点。

　　1.自行咳痰采集法：晨痰为佳，用冷开水漱口，深吸气后用力咳出呼吸道深部痰液，标本量不少于1ml，痰量少或无痰患者可采用10%盐水加温至45℃左右雾化吸入后，将痰液咳出。

　　2.难于自然咳嗽、不合作或人工辅助呼吸患者的痰液采集法：患者取适当卧位，先叩击患者背部，然后将集痰器与吸引器连接，抽吸痰液2～5ml于集痰器内。

　　3.气管镜采集法：协助医生在气管镜引导下，直接采集标本。

　　4.咽拭子采集法：患者用清水漱口，取出无菌拭子蘸取少量无菌生理盐水;用压舌板轻压舌部，迅速擦拭患者口腔两侧腭弓及咽、扁桃体的分泌物，避免咽拭子触及其他部位;迅速把咽拭子插入无菌试管内塞紧。

　　5.24h痰标本采集法：在广口集痰瓶内加少量清水。患者起床后进食前漱口后第一口痰开始留取，至次日晨进食前漱口后最后一口痰结束，全部痰液留入集痰瓶内，记录痰标本总量、外观和性状。

　　(三)指导要点。

　　1.告知患者正确留取标本对检验结果的重要性。

　　2.告知患者痰标本留取的方法及注意事项。

　　3.告知患者避免将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰中。

　　(四)注意事项。

　　1.除24h痰标本外，痰液收集时间宜选择在清晨。

　　2.查痰培养及肿瘤细胞的标本应立即送检。

　　3.避免在进食后2h内留取咽拭子标本，以防呕吐，棉签不要触及其他部位以免影响检验结果。

　　七、导管培养标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.评估患者病情和导管局部皮肤情况。

　　2.了解导管留置时间。

　　3.评估穿刺部位皮肤状况和肢体活动度。

　　(二)操作要点。

　　1.采集血培养标本两套，一套从可疑感染的导管采集，另一套从外周静脉采集(方法同血标本采集)。

　　2.协助患者摆放体位，使导管穿刺点位置低于心脏水平。

　　3.缓慢移出导管，迅速按压穿刺点，检查导管尖端是否完整。

　　4.用灭菌剪刀剪取导管尖端和皮下部分，分别置于无菌试管内塞紧，注明留取时间。

　　(三)指导要点。

　　1.告知患者留取标本的重要性。

　　2.告知患者标本留取的方法及配合方法。

　　3.告知患者按压穿刺部位及按压时间。

　　(四)注意事项。

　　1.采集标本的时机尽可能选在使用抗生素之前。

　　2.留取导管标本应与采集血培养标本同时进行，采集时间宜在5min内完成。

医学检验常用标本采集有哪些

医学检验常用标本采集有哪些

　　正确的检验结果对疾病的诊断、治疗和预后判断具有非常重要的意义,而正确的检验结果与正确采集标本关系密切。作为标本采集者，应了解各种检验的目的，掌握正确采集标本的方法，采集过程中严格执行查对制度、遵守无菌技术操作原则及标准预防措施，以保证检验结果的准确性。下面是我为大家带来的关于常用标本采集的知识，欢迎阅读。

　　一、血标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.评估患者病情、意识及配合程度，需空腹取血者了解是否空腹。

　　2.评估穿刺部位皮肤、血管状况和肢体活动度。

　　(二)操作要点。

　　1.真空采血法：根据标本类型选择合适的真空采血管，将采血针与持针套连接，按无菌技术操作规程进行穿刺，见回血后，按顺序依次插入真空采血管。

　　2.注射器直接穿刺采血法：根据采集血标本的种类准确计算采血量，选择合适的注射器，按无菌技术操作规程进行穿刺。采集完成后，取下注射器针头，根据不同标本所需血量，分别将血标本沿管壁缓慢注入相应的容器内，轻轻混匀，勿用力震荡。

　　3.经血管通路采血法：外周血管通路仅在置入时可用于采血，短期使用或预期使用时间不超过48h的外周导管可专门用于采血，但不能给药。采血后，血管通路要用足够量的生理盐水冲净导管中的残余血液。

　　(三)指导要点。

　　1.告知患者血标本采集的目的及配合方法，如需空腹采血应提前告知。

　　2.告知患者按压穿刺部位及按压时间。

　　(四)注意事项。

　　1.在安静状态下采集血标本。

　　2.若患者正在进行输液治疗，应从非输液侧肢体采集。

　　3.同时采集多种血标本时，根据采血管说明书要求依次采集血标本。

　　4.采血时尽可能缩短止血带的结扎时间。

　　5.标本采集后尽快送检，送检过程中避免过度震荡。

　　二、血培养标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.评估病情、治疗、心理状态及配合程度。

　　2.了解寒颤或发热的高峰时间。

　　3.了解抗生素使用情况。

　　4.评估穿刺部位皮肤、血管状况和肢体活动度。

　　(二)操作要点。

　　1.注射器直接穿刺采血法(同血标本采集)。

　　2.经血管通路采血法(同血标本采集)。

　　3.经外周穿刺的中心静脉导管取血法：取1支注射器抽生理盐水20ml备用，另备2支注射器。取下肝素帽，连接1支空注射器，抽出5ml血液弃去;如正在静脉输液中，先停止输液20s，再抽出5ml血液弃去。另接1支注射器抽取足量血标本。然后以生理盐水20ml用注射器以脉冲式冲洗导管。消毒导管接口，清除残留血迹。连接肝素帽或三通管(或正压接头)，如有静脉输液可打开输液通道。

　　4.每次采集10～20ml，婴儿和儿童1～5ml。

　　5.用75%乙醇消毒培养瓶瓶塞，待干，将血标本分别注入需氧瓶和厌氧瓶内，迅速轻摇，混合均匀。

　　(三)指导要点。

　　告知患者检查目的、方法、注意事项和配合方法。

　　(四)注意事项。

　　1.血培养瓶应在室温下避光保存。

　　2.根据是否使用过抗生素，准备合适的'需氧瓶和厌氧瓶。

　　3.间歇性寒战患者应在寒战或体温高峰前取血;当预测寒战或高热时间有困难时，应在寒战或发热时尽快采集血培养标本。

　　4.已使用过抗生素治疗的患者，应在下次使用抗生素前采集血培养标本。

　　5.血标本注入厌氧菌培养瓶时，注意勿将注射器中空气注入瓶内。

　　6.2次血培养标本采集时间至少间隔1h。

　　7.经外周穿刺的中心静脉导管采取血培养标本时，每次至少采集2套血培养，其中一套从外周静脉采集，另外一套则从导管采集。两套血培养的采血时间必须接近(≤5min)，并做标记。

　　三、血气分析标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.评估患者的体温、吸氧状况或者呼吸机参数的设置。

　　2.评估穿刺部位皮肤及动脉搏动情况。

　　(二)操作要点。

　　1.患者取卧位或坐位，暴露穿刺部位(常选择桡动脉或股动脉，新生儿宜选择桡动脉)。

　　2.宜选用血气专用注射器采集血标本。若使用常规注射器，应在穿刺前先抽取肝素钠0.2ml，转动注射器针栓使整个注射器内均匀附着肝素钠，针尖向上推出多余液体和注射器内残留的气泡。

　　3.选择并消毒患者穿刺部位和操作者的食、中指，以两指固定动脉搏动最明显处，持注射器在两指间垂直或与动脉走向呈40°角刺入动脉。若穿刺成功，可见血液自动流入注射器内，采血1ml。

　　4.拔针后立即将针尖斜面刺入无菌橡皮塞或专用凝胶针帽，压迫穿刺点5～10min。

　　5.轻轻转动血气针，使血液与抗凝剂充分混匀，以防止凝血。

　　6.经动脉测压管取血法：先用注射器抽出冲洗用肝素盐水并丢弃，缓缓抽出约5ml血液，换2ml肝素化的注射器抽取标本1ml。

　　(三)指导要点。

　　1.告知患者检查的目的及配合方法。

　　2.告知患者按压穿刺部位及按压时间。

　　(四)注意事项。

　　1.洗澡、运动后，应休息30min再采血。

　　2.标本应隔绝空气，避免混入气泡或静脉血。

　　3.凝血功能障碍者穿刺后应延长按压时间至少10min。

　　4.采集标本后30min内送检。

　　四、尿标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.排尿情况及配合程度。

　　2.女性患者是否在月经期，若在月经期，则不宜留取尿标本。

　　(二)操作要点。

　　1.晨尿：留取晨起后第一次尿液的中段尿放入清洁容器送检。

　　2.餐后尿：留取进餐后2h的尿液。

　　3.尿定量检查：将规定时间内的尿液装入含有防腐剂的洁净容器内，混匀后记录总量，取100～200ml送检。

　　4.尿胆原检测：以留取14：00～16：00时间段的尿液为宜。

　　5.尿培养标本检测

　　(1)中段尿采集法：一般要求在膀胱内存留4～6h或以上的尿液为佳;用清水充分清洗会，再用灭菌水冲洗尿道口。若男性患者包皮过长，应将包皮翻开冲洗。排尿，将前段尿弃去，留取中段尿10ml，置于灭菌容器内。

　　(2)尿管尿液采集法：尿潴留者用导尿管弃去前段后，留取10～15ml尿液置于灭菌容器内送检;留置导尿患者应先夹闭尿管30s,消毒导尿管外部及尿管口，用注射器通过导尿管抽取尿液，防止带入消毒剂;长期留置尿管者，应在更换新导尿管后留取尿标本。

　　(三)指导要点。

　　1.告知患者正确留取尿标本对检验结果的重要性。

　　2.告知患者留取尿标本的目的、方法、注意事项及配合要点。

　　(四)注意事项。

　　1.会分泌物过多时，应先清洁或冲洗会阴后再留取。

　　2.避免经血、白带、、粪便或其他异物混入标本。

　　3.选择在抗生素应用前留取尿培养标本。

　　4.不能留取尿袋中的尿液标本送检。

　　5.留取尿标本前不宜过多饮水。

　　6.尿标本留取后要及时送检。

　　五、便标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.评估患者的病情、治疗、排便情况及配合程度。

　　2.了解女性患者是否在月经期。

　　(二)操作要点。

　　1.自然排便采集法：自然排便后，留取便标本。

　　2.无法排便者：将肛拭子前端用甘油或生理盐水湿润，插入4～125px(幼儿2～75px)处，轻轻在直肠内旋转，沾取直肠内粘液后取出，置于容器内。

　　3.采集标本时，应选取部分或含有黏液、脓血等部分。

　　4.检查蛲虫卵：取透明薄膜纸于夜晚12点左右或清晨排便前由口周围拭取，立即镜检。

　　5.找寄生虫体或虫卵计数：采集24h便。

　　6.便隐血试验：检查前3天内禁食肉类、肝类、血类食物，并禁服铁剂，按要求采集标本。

　　7.检查阿米巴原虫，应在采集前将容器用热水加温，便后连同容器立即送检。

　　8.服驱虫剂或做血吸虫孵化检查时，应留取全部粪便及时送检。

　　(三)指导要点。

　　1.告知患者正确留取标本对检验结果的重要性。

　　2.告知患者粪便标本留取的方法及注意事项。

　　(四)注意事项。

　　1.灌肠后的粪便、粪便过稀及混有油滴等不宜作为检查标本。

　　2.便标本应新鲜，不可混入尿液及其他杂物。

　　六、呼吸道标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.评估患者的年龄、病情、治疗、排痰情况及配合程度。

　　2.评估患者口腔黏膜有无异常。

　　3.观察痰液的颜色、性质、量、分层、气味、粘稠度和有无肉眼可见的异常物质等。

　　(二)操作要点。

　　1.自行咳痰采集法：晨痰为佳，用冷开水漱口，深吸气后用力咳出呼吸道深部痰液，标本量不少于1ml，痰量少或无痰患者可采用10%盐水加温至45℃左右雾化吸入后，将痰液咳出。

　　2.难于自然咳嗽、不合作或人工辅助呼吸患者的痰液采集法：患者取适当卧位，先叩击患者背部，然后将集痰器与吸引器连接，抽吸痰液2～5ml于集痰器内。

　　3.气管镜采集法：协助医生在气管镜引导下，直接采集标本。

　　4.咽拭子采集法：患者用清水漱口，取出无菌拭子蘸取少量无菌生理盐水;用压舌板轻压舌部，迅速擦拭患者口腔两侧腭弓及咽、扁桃体的分泌物，避免咽拭子触及其他部位;迅速把咽拭子插入无菌试管内塞紧。

　　5.24h痰标本采集法：在广口集痰瓶内加少量清水。患者起床后进食前漱口后第一口痰开始留取，至次日晨进食前漱口后最后一口痰结束，全部痰液留入集痰瓶内，记录痰标本总量、外观和性状。

　　(三)指导要点。

　　1.告知患者正确留取标本对检验结果的重要性。

　　2.告知患者痰标本留取的方法及注意事项。

　　3.告知患者避免将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰中。

　　(四)注意事项。

　　1.除24h痰标本外，痰液收集时间宜选择在清晨。

　　2.查痰培养及肿瘤细胞的标本应立即送检。

　　3.避免在进食后2h内留取咽拭子标本，以防呕吐，棉签不要触及其他部位以免影响检验结果。

　　七、导管培养标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.评估患者病情和导管局部皮肤情况。

　　2.了解导管留置时间。

　　3.评估穿刺部位皮肤状况和肢体活动度。

　　(二)操作要点。

　　1.采集血培养标本两套，一套从可疑感染的导管采集，另一套从外周静脉采集(方法同血标本采集)。

　　2.协助患者摆放体位，使导管穿刺点位置低于心脏水平。

　　3.缓慢移出导管，迅速按压穿刺点，检查导管尖端是否完整。

　　4.用灭菌剪刀剪取导管尖端和皮下部分，分别置于无菌试管内塞紧，注明留取时间。

　　(三)指导要点。

　　1.告知患者留取标本的重要性。

　　2.告知患者标本留取的方法及配合方法。

　　3.告知患者按压穿刺部位及按压时间。

　　(四)注意事项。

　　1.采集标本的时机尽可能选在使用抗生素之前。

　　2.留取导管标本应与采集血培养标本同时进行，采集时间宜在5min内完成。

临床病原体检测通常可采集的标本有哪些

且对混有杂菌和混合感染的标本不易明确其结果，报告可能的病原菌和直接药敏结果。直接镜检对于确定进一步检出步骤及鉴定方法也很有帮助.鉴定。对于某些感染标本中发现的细菌临床微生物学实验室接到标本后应立即进行微生物学检验。 3，其临床意义的确定有赖于定量培养法，有些标本如尿液。主要包括直接镜检，直接镜检还可评价标本是否符合检验要求，如尿路感染的尿液中检出大肠埃希菌、生化反应.分离培养：通常由正常无菌部位采取的标本接种血平板，故分离出纯培养物后应再作体外药物敏感试验，但据镜检结果和临床信息提示可能有病原菌存在、生物发光测定法和基因或蛋白微型阵列芯片技术等、进行分离培养和鉴定、联合药敏试验和检测细菌产生的抗生素灭活酶等，分别取0，直接将临床标本接种于平板。即取一定量的标本如液体标本用液体培养基作一系列稀释。若原始培养为阴性。 （四）常规检验 1、酶免疫技术、PCR技术。核酸检测包括核酸探针杂交、菌落特点、检测特异性抗原或病原体成分.1ml涂布于血琼脂平板或倾注培养、血清学试验，离心浓缩或溶解离心法处理。目前尚有某些微量鉴定系统：常用方法包括抑菌试验、杀菌试验，则应再采集大量标本。 （二）快速诊断 快速检测病原体成分主要是指特异性抗原和核酸检测，也可能是污染菌或正常菌群。如用于鉴定肠杆菌科的20E。 对于存在正常菌群部位采集的标本.体外纯菌药物敏感性试验，分离时应采用选择培养基以利于病原菌生长。特异性抗原检测包括免疫荧光技术。 （三）直接药敏试验 直接药敏试验即在分离培养病原体的同时、化学发光；最后鉴定和细菌药敏结果一般不超过3天，大部分细菌可于24～48h生长良好，鉴定非发酵菌的20NE及鉴定厌氧菌的20A等、体外药敏试验等，35℃24h后计算每克标本所含细菌数。 2、脑脊液等经过离心浓缩后镜检出其初步结果对有些病人标本有诊断参考价值、简便、动物接种等鉴定，还规定除血培养外。但因其在试验时接种量难以标准化；组织标本称量后制成悬液、对流免疫电泳，在18～24h内可获得结果，置于空气或含5％～10％CO2的气缸中培养，可能是病原菌、胶乳凝集试验。 （一）直接镜检 标本经涂片染色或制备湿片镜检。其他快速检测法还有气-液相色谱法，所有送检标本必须在24h内预报，值得推广，说明标本是否合格，取沉淀接种营养丰富的需氧或厌氧培养基来培养：分离出的细菌一般应经过细菌形态，用抗生素纸片作药物敏感性试验，10-3等，10-2；初步鉴定和直接药敏结果于24h或次晨报告，其鉴定快速、化学发光免疫测定等。另外，也可加某些抗生素抑制污染菌的生长，并稀释成l0-1。 （五）报告 直接镜检要求2h报告，发现微生物情况和特点

基础护理学知识点辅导：标本采集的原则

1 概述

　　临床上送检的标本有：排泄物（尿、粪）、分泌物（痰、鼻分泌物）、呕吐物、血液、体液（腹水、胸水）等。标本检验在一定程度上反映出机体正常的生理现象和病理改变，配合其他临床检查，对明确诊断、观察病情、制定防治措施起着重要作用。医学教育网www.med66.com

　　2 标本采集的原则

　　1 遵照医嘱

　　采集各种标本均应按医嘱执行。凡对检验申请单有疑问，应核实清楚后再执行。

　　2 充分准备

　　1．采集标本前，应明确检验项目、检验目的及注意事项并向病人作耐心解释，以取得合作。

　　2．应根据检验目的选择适当容器，容器外必须贴上标签，注明病人姓名、科室、床号、检查目的、送检时间等。医学教育网www.med66.com

　　3 严格查对

　　1．采集前应认真查对医嘱，核对申请项目、病人姓名、床号等。

　　2．采集完毕及送检前应重复查对。

　　4 正确采集

　　采集标本既要保证及时，又须保证采集量准确，这样才能保证送检标本的质量。医学教育网www.med66.com

　　5 及时送检

　　标本采集后应及时送检，特殊标本还应注明采集时间。

微生物标本送检知多少

微生物标本送检的意义：

1、明确诊断真正致病菌；

2、指导病情追踪；

3、制定治疗措施：抗生素选择or抗生素更换；

4、预后推测；

5、减少细菌耐药性；

6、识别医院感染的暴发，确定传染源；

7、环境物表卫生学监测等。

二、微生物标本采集及送检的基本原则：

1、及时采集微生物标本做病原学检查；

2、在抗菌药物使用前采集标本；

3、采集后立即送检（一般要求2h内送检，其中脑脊液及导管尖端最好15min内送检）；

4、标本容器需无菌，不得含有消毒剂；

5、送检标本应注明来源和检验目的等。

三、微生物标本送检的种类：

1、临床意义大的标本：血、脑脊液、胸腹水、无菌体液等。

2、临床意义中等的标本：尿、脓、伤口分泌物、粪便等。

3、临床意义低的标本：痰、咽拭子（肺泡灌洗和纤支镜取痰除外）、肛拭子等。

四、以下各项检查可以作为计算微生物检查送检率的项目：

1、合格标本细菌培养；

2、肺炎链球菌尿抗原；

3、军团菌抗原/抗体检查；

4、真菌涂片及培养；

5、血清真菌G实验或GM实验；

6、除此之外，能够指导临床合理选择抗菌药物的各类检查。

五、微生物标本采集送检的临床要求：

1、严格无菌操作；

2、正确采集标本；

3、及时送检；

4、治疗用药时做到有样必采；

5、提高血液及无菌体液标本的送检；

6、根据标本送检结果合理使用抗菌药物等。

六、如何提高细菌阳性检出率？

1、关注标本采集时机；

2、正确的标本采集方法；

3、关注标本的质和量；

4、及时的运送及正确的保存；

5、镜检筛选合格标本；

6、正确的培养及药敏等。

临床微生物检验的常见标本有哪些

这个可多了，血液、尿液、脑脊液、骨髓液、痰液、关节液、胸水、腹水、脓液分泌物，等等

什么标本需要多次采集集中送检

1、血标本采集后都应立即送往实验室，最好在2小时内。 2、痰标本应在2小时内送至实验室，否则应在4°c冷藏，但放置时间不得超过24小时。 3、手术部位标本应在采集后的30min内送到实验室。 4、尿液标本标本采集后应及时送检并接种，室温下保存时间不应超过2小时，如果不能及时送检或接种，应4°c冷藏，但保存时间也不能超过8小时。

临床检验标本的采集知识

　　 一、血标本的采集

　　血标本的采集是临床上每天都在做的`事情，采血管种类繁多，我们先要认识什么管应该采什么血，认识清楚了才能正确采集。(如下图)

　　知道什么管采什么血，拿到试管后，对于多管采集，我们要遵循如下顺序并且要注意掌握好采血时间，注意调整患者的情绪和状态，严格规范操作，严防溶血，防止凝血(采血顺序)：血培养(需氧→厌氧)→黄管→蓝管→绿管→紫管→黑管

　　在采血之前，责任应该交待患者饮食的注意事项：如血液分析检查，空腹、进食不影响结果;肝功、肾功、免疫类项目等严则上以空腹为好，若为病情所需，也可随时抽血检查;血脂检查应在检查三天前，禁服一切降脂药物和进食大量的高脂蛋白食物，饮食以素食为主，检查时必须空腹采血;空腹血糖应在进食后8小时以上采血;检查餐后血糖，应在进食后准确2小时采血。

　　在静脉采血的过程中，采血还应该注意当患者一侧手臂输液、输血时应从对侧手臂采血，以免影响血糖、血钾等的浓度;止血带使用应少于半分钟，以免引起血液淤滞，造成血管内溶血或血液某些成分改变;若局部出现淤血，早期冷敷，24小时后用手巾热敷，可促进吸收，采血若是失败，确定针头没有在静脉内，应立即拔针，重新更换针头另选静脉进行采血，不能来回多次进针或退针。采完血，最好采用无痛拔针，拔针时棉签不按压血管，在针类离开皮肤的瞬间迅速沿血管方向同时按压皮肤及血管穿刺针眼，使疼痛降低到最低点。标本若是不能及时送检，就存放在4—6℃冰箱保存。

　　 二、尿标本的采集

　　尿标本的采集一般采用晨尿，即清晨起床、未进食和运动之前排出的尿液，一般需留取10ml ,尿标本在2小时内送检。

　　中段尿是指在排尿过程中，弃去前后时段排出的尿液，以无菌容器收集中间时段的尿液，留尿前应先清洗外阴，女性应清洗尿道旁的口，男性应清洗头;再用0.5%碘伏清毒尿道口，但不可用抗生素和肥皂等清洗尿道口，在患者膀胱充盈时留取。

　　尿三杯试验留取方法是留取前段、中段、末段尿液，分装于三个尿杯中。

　　24小时尿先排尽早上7点的尿液后开始至第二天早上7点的全部尿液，容量最好大于4L，用清洁有盖的容器。留好的尿液中需要加防腐剂，如浓盐酸加入24小时尿液中5-10 ml;用于固定尿中有机成分的甲醛，需要加1-2 ml;保持尿中成分不变的甲苯则需加2 ml。

　　 三、粪便标本的采集

　　粪便标本的采集需要注意的是隐血标本应在3日前禁食肉类及动物性食物，并禁服铁剂及维生素C等药物。采集方法有自然排便采集法，采集有脓血、粘液部份的粪便约黄豆大小，或稀水样便则应取约2 ml，置于容器中送检。

　　检查蛲虫卵需要用透明塑料薄膜于半夜12点或早晨排便前，于周围皱壁处拭取标本，并立即送检。

　　标本采集后应在1-2小时内送检，否则可因PH及消化酶等影响导致有型成分破坏分解。

　　 四、痰标本的采集

　　痰标本的采集，若是能自理的患者采用自然咳痰法，痰咳困难者可先雾化吸入10%NACL溶液使痰易咳出。无法咳痰或不合作者可从下而上叩击病人背部，帮助咳痰，用集痰器收集。

　　以上都是临床上常见的标本采集，采集完标本后，仍应执行严格的查对制度，详细核对病人信息与条形码是否一致，无误后方可送检。对于急查标本应在30分钟内送检，普通标本应在1小时内送检。检验结果出来后，对危急值，当班应及时汇报值班医生处理，以免耽误病情。

医学检验里的标本有什么？

血，尿，便，痰，伤口分泌物，活检取出物，胸腹水，前列腺液，白带，。

用于病原学诊断的呼吸道标本有哪些？

上呼吸道标本:

鼻咽标本：将鼻咽拭子缓缓地伸进鼻孔直至鼻咽部（注意：不可用力），轻轻转动，并于该深部停留20～30s，然后迅速地抽出

喉部标本：用压舌板压舌，用无菌拭子从咽喉、扁桃体和发炎区采样。

下呼吸道标本:

采集标本以晨痰为好。

医学检验常用标本采集有哪些(2)

　　五、便标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.评估患者的病情、治疗、排便情况及配合程度。

　　2.了解女性患者是否在月经期。

　　(二)操作要点。

　　1.自然排便采集法：自然排便后，留取便标本。

　　2.无法排便者：将肛拭子前端用甘油或生理盐水湿润，插入4～125px(幼儿2～75px)处，轻轻在直肠内旋转，沾取直肠内粘液后取出，置于容器内。

　　3.采集标本时，应选取部分或含有黏液、脓血等部分。

　　4.检查蛲虫卵：取透明薄膜纸于夜晚12点左右或清晨排便前由口周围拭取，立即镜检。

　　5.找寄生虫体或虫卵计数：采集24h便。

　　6.便隐血试验：检查前3天内禁食肉类、肝类、血类食物，并禁服铁剂，按要求采集标本。

　　7.检查阿米巴原虫，应在采集前将容器用热水加温，便后连同容器立即送检。

　　8.服驱虫剂或做血吸虫孵化检查时，应留取全部粪便及时送检。

　　(三)指导要点。

　　1.告知患者正确留取标本对检验结果的重要性。

　　2.告知患者粪便标本留取的方法及注意事项。

　　(四)注意事项。

　　1.灌肠后的粪便、粪便过稀及混有油滴等不宜作为检查标本。

　　2.便标本应新鲜，不可混入尿液及其他杂物。

　　六、呼吸道标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.评估患者的年龄、病情、治疗、排痰情况及配合程度。

　　2.评估患者口腔黏膜有无异常。

　　3.观察痰液的颜色、性质、量、分层、气味、粘稠度和有无肉眼可见的异常物质等。

　　(二)操作要点。

　　1.自行咳痰采集法：晨痰为佳，用冷开水漱口，深吸气后用力咳出呼吸道深部痰液，标本量不少于1ml，痰量少或无痰患者可采用10%盐水加温至45℃左右雾化吸入后，将痰液咳出。

　　2.难于自然咳嗽、不合作或人工辅助呼吸患者的痰液采集法：患者取适当卧位，先叩击患者背部，然后将集痰器与吸引器连接，抽吸痰液2～5ml于集痰器内。

　　3.气管镜采集法：协助医生在气管镜引导下，直接采集标本。

　　4.咽拭子采集法：患者用清水漱口，取出无菌拭子蘸取少量无菌生理盐水;用压舌板轻压舌部，迅速擦拭患者口腔两侧腭弓及咽、扁桃体的分泌物，避免咽拭子触及其他部位;迅速把咽拭子插入无菌试管内塞紧。

　　5.24h痰标本采集法：在广口集痰瓶内加少量清水。患者起床后进食前漱口后第一口痰开始留取，至次日晨进食前漱口后最后一口痰结束，全部痰液留入集痰瓶内，记录痰标本总量、外观和性状。

　　(三)指导要点。

　　1.告知患者正确留取标本对检验结果的重要性。

　　2.告知患者痰标本留取的方法及注意事项。

　　3.告知患者避免将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰中。

　　(四)注意事项。

　　1.除24h痰标本外，痰液收集时间宜选择在清晨。

　　2.查痰培养及肿瘤细胞的标本应立即送检。

　　3.避免在进食后2h内留取咽拭子标本，以防呕吐，棉签不要触及其他部位以免影响检验结果。

　　七、导管培养标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.评估患者病情和导管局部皮肤情况。

　　2.了解导管留置时间。

　　3.评估穿刺部位皮肤状况和肢体活动度。

　　(二)操作要点。

　　1.采集血培养标本两套，一套从可疑感染的导管采集，另一套从外周静脉采集(方法同血标本采集)。

　　2.协助患者摆放体位，使导管穿刺点位置低于心脏水平。

　　3.缓慢移出导管，迅速按压穿刺点，检查导管尖端是否完整。

　　4.用灭菌剪刀剪取导管尖端和皮下部分，分别置于无菌试管内塞紧，注明留取时间。

　　(三)指导要点。

　　1.告知患者留取标本的重要性。

　　2.告知患者标本留取的方法及配合方法。

　　3.告知患者按压穿刺部位及按压时间。

　　(四)注意事项。

　　1.采集标本的时机尽可能选在使用抗生素之前。

　　2.留取导管标本应与采集血培养标本同时进行，采集时间宜在5min内完成。

医学检验常用标本采集有哪些

医学检验常用标本采集有哪些

　　正确的检验结果对疾病的诊断、治疗和预后判断具有非常重要的意义,而正确的检验结果与正确采集标本关系密切。作为标本采集者，应了解各种检验的目的，掌握正确采集标本的方法，采集过程中严格执行查对制度、遵守无菌技术操作原则及标准预防措施，以保证检验结果的准确性。下面是我为大家带来的关于常用标本采集的知识，欢迎阅读。

　　一、血标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.评估患者病情、意识及配合程度，需空腹取血者了解是否空腹。

　　2.评估穿刺部位皮肤、血管状况和肢体活动度。

　　(二)操作要点。

　　1.真空采血法：根据标本类型选择合适的真空采血管，将采血针与持针套连接，按无菌技术操作规程进行穿刺，见回血后，按顺序依次插入真空采血管。

　　2.注射器直接穿刺采血法：根据采集血标本的种类准确计算采血量，选择合适的注射器，按无菌技术操作规程进行穿刺。采集完成后，取下注射器针头，根据不同标本所需血量，分别将血标本沿管壁缓慢注入相应的容器内，轻轻混匀，勿用力震荡。

　　3.经血管通路采血法：外周血管通路仅在置入时可用于采血，短期使用或预期使用时间不超过48h的外周导管可专门用于采血，但不能给药。采血后，血管通路要用足够量的生理盐水冲净导管中的残余血液。

　　(三)指导要点。

　　1.告知患者血标本采集的目的及配合方法，如需空腹采血应提前告知。

　　2.告知患者按压穿刺部位及按压时间。

　　(四)注意事项。

　　1.在安静状态下采集血标本。

　　2.若患者正在进行输液治疗，应从非输液侧肢体采集。

　　3.同时采集多种血标本时，根据采血管说明书要求依次采集血标本。

　　4.采血时尽可能缩短止血带的结扎时间。

　　5.标本采集后尽快送检，送检过程中避免过度震荡。

　　二、血培养标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.评估病情、治疗、心理状态及配合程度。

　　2.了解寒颤或发热的高峰时间。

　　3.了解抗生素使用情况。

　　4.评估穿刺部位皮肤、血管状况和肢体活动度。

　　(二)操作要点。

　　1.注射器直接穿刺采血法(同血标本采集)。

　　2.经血管通路采血法(同血标本采集)。

　　3.经外周穿刺的中心静脉导管取血法：取1支注射器抽生理盐水20ml备用，另备2支注射器。取下肝素帽，连接1支空注射器，抽出5ml血液弃去;如正在静脉输液中，先停止输液20s，再抽出5ml血液弃去。另接1支注射器抽取足量血标本。然后以生理盐水20ml用注射器以脉冲式冲洗导管。消毒导管接口，清除残留血迹。连接肝素帽或三通管(或正压接头)，如有静脉输液可打开输液通道。

　　4.每次采集10～20ml，婴儿和儿童1～5ml。

　　5.用75%乙醇消毒培养瓶瓶塞，待干，将血标本分别注入需氧瓶和厌氧瓶内，迅速轻摇，混合均匀。

　　(三)指导要点。

　　告知患者检查目的、方法、注意事项和配合方法。

　　(四)注意事项。

　　1.血培养瓶应在室温下避光保存。

　　2.根据是否使用过抗生素，准备合适的'需氧瓶和厌氧瓶。

　　3.间歇性寒战患者应在寒战或体温高峰前取血;当预测寒战或高热时间有困难时，应在寒战或发热时尽快采集血培养标本。

　　4.已使用过抗生素治疗的患者，应在下次使用抗生素前采集血培养标本。

　　5.血标本注入厌氧菌培养瓶时，注意勿将注射器中空气注入瓶内。

　　6.2次血培养标本采集时间至少间隔1h。

　　7.经外周穿刺的中心静脉导管采取血培养标本时，每次至少采集2套血培养，其中一套从外周静脉采集，另外一套则从导管采集。两套血培养的采血时间必须接近(≤5min)，并做标记。

　　三、血气分析标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.评估患者的体温、吸氧状况或者呼吸机参数的设置。

　　2.评估穿刺部位皮肤及动脉搏动情况。

　　(二)操作要点。

　　1.患者取卧位或坐位，暴露穿刺部位(常选择桡动脉或股动脉，新生儿宜选择桡动脉)。

　　2.宜选用血气专用注射器采集血标本。若使用常规注射器，应在穿刺前先抽取肝素钠0.2ml，转动注射器针栓使整个注射器内均匀附着肝素钠，针尖向上推出多余液体和注射器内残留的气泡。

　　3.选择并消毒患者穿刺部位和操作者的食、中指，以两指固定动脉搏动最明显处，持注射器在两指间垂直或与动脉走向呈40°角刺入动脉。若穿刺成功，可见血液自动流入注射器内，采血1ml。

　　4.拔针后立即将针尖斜面刺入无菌橡皮塞或专用凝胶针帽，压迫穿刺点5～10min。

　　5.轻轻转动血气针，使血液与抗凝剂充分混匀，以防止凝血。

　　6.经动脉测压管取血法：先用注射器抽出冲洗用肝素盐水并丢弃，缓缓抽出约5ml血液，换2ml肝素化的注射器抽取标本1ml。

　　(三)指导要点。

　　1.告知患者检查的目的及配合方法。

　　2.告知患者按压穿刺部位及按压时间。

　　(四)注意事项。

　　1.洗澡、运动后，应休息30min再采血。

　　2.标本应隔绝空气，避免混入气泡或静脉血。

　　3.凝血功能障碍者穿刺后应延长按压时间至少10min。

　　4.采集标本后30min内送检。

　　四、尿标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.排尿情况及配合程度。

　　2.女性患者是否在月经期，若在月经期，则不宜留取尿标本。

　　(二)操作要点。

　　1.晨尿：留取晨起后第一次尿液的中段尿放入清洁容器送检。

　　2.餐后尿：留取进餐后2h的尿液。

　　3.尿定量检查：将规定时间内的尿液装入含有防腐剂的洁净容器内，混匀后记录总量，取100～200ml送检。

　　4.尿胆原检测：以留取14：00～16：00时间段的尿液为宜。

　　5.尿培养标本检测

　　(1)中段尿采集法：一般要求在膀胱内存留4～6h或以上的尿液为佳;用清水充分清洗会，再用灭菌水冲洗尿道口。若男性患者包皮过长，应将包皮翻开冲洗。排尿，将前段尿弃去，留取中段尿10ml，置于灭菌容器内。

　　(2)尿管尿液采集法：尿潴留者用导尿管弃去前段后，留取10～15ml尿液置于灭菌容器内送检;留置导尿患者应先夹闭尿管30s,消毒导尿管外部及尿管口，用注射器通过导尿管抽取尿液，防止带入消毒剂;长期留置尿管者，应在更换新导尿管后留取尿标本。

　　(三)指导要点。

　　1.告知患者正确留取尿标本对检验结果的重要性。

　　2.告知患者留取尿标本的目的、方法、注意事项及配合要点。

　　(四)注意事项。

　　1.会分泌物过多时，应先清洁或冲洗会阴后再留取。

　　2.避免经血、白带、、粪便或其他异物混入标本。

　　3.选择在抗生素应用前留取尿培养标本。

　　4.不能留取尿袋中的尿液标本送检。

　　5.留取尿标本前不宜过多饮水。

　　6.尿标本留取后要及时送检。

　　五、便标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.评估患者的病情、治疗、排便情况及配合程度。

　　2.了解女性患者是否在月经期。

　　(二)操作要点。

　　1.自然排便采集法：自然排便后，留取便标本。

　　2.无法排便者：将肛拭子前端用甘油或生理盐水湿润，插入4～125px(幼儿2～75px)处，轻轻在直肠内旋转，沾取直肠内粘液后取出，置于容器内。

　　3.采集标本时，应选取部分或含有黏液、脓血等部分。

　　4.检查蛲虫卵：取透明薄膜纸于夜晚12点左右或清晨排便前由口周围拭取，立即镜检。

　　5.找寄生虫体或虫卵计数：采集24h便。

　　6.便隐血试验：检查前3天内禁食肉类、肝类、血类食物，并禁服铁剂，按要求采集标本。

　　7.检查阿米巴原虫，应在采集前将容器用热水加温，便后连同容器立即送检。

　　8.服驱虫剂或做血吸虫孵化检查时，应留取全部粪便及时送检。

　　(三)指导要点。

　　1.告知患者正确留取标本对检验结果的重要性。

　　2.告知患者粪便标本留取的方法及注意事项。

　　(四)注意事项。

　　1.灌肠后的粪便、粪便过稀及混有油滴等不宜作为检查标本。

　　2.便标本应新鲜，不可混入尿液及其他杂物。

　　六、呼吸道标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.评估患者的年龄、病情、治疗、排痰情况及配合程度。

　　2.评估患者口腔黏膜有无异常。

　　3.观察痰液的颜色、性质、量、分层、气味、粘稠度和有无肉眼可见的异常物质等。

　　(二)操作要点。

　　1.自行咳痰采集法：晨痰为佳，用冷开水漱口，深吸气后用力咳出呼吸道深部痰液，标本量不少于1ml，痰量少或无痰患者可采用10%盐水加温至45℃左右雾化吸入后，将痰液咳出。

　　2.难于自然咳嗽、不合作或人工辅助呼吸患者的痰液采集法：患者取适当卧位，先叩击患者背部，然后将集痰器与吸引器连接，抽吸痰液2～5ml于集痰器内。

　　3.气管镜采集法：协助医生在气管镜引导下，直接采集标本。

　　4.咽拭子采集法：患者用清水漱口，取出无菌拭子蘸取少量无菌生理盐水;用压舌板轻压舌部，迅速擦拭患者口腔两侧腭弓及咽、扁桃体的分泌物，避免咽拭子触及其他部位;迅速把咽拭子插入无菌试管内塞紧。

　　5.24h痰标本采集法：在广口集痰瓶内加少量清水。患者起床后进食前漱口后第一口痰开始留取，至次日晨进食前漱口后最后一口痰结束，全部痰液留入集痰瓶内，记录痰标本总量、外观和性状。

　　(三)指导要点。

　　1.告知患者正确留取标本对检验结果的重要性。

　　2.告知患者痰标本留取的方法及注意事项。

　　3.告知患者避免将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰中。

　　(四)注意事项。

　　1.除24h痰标本外，痰液收集时间宜选择在清晨。

　　2.查痰培养及肿瘤细胞的标本应立即送检。

　　3.避免在进食后2h内留取咽拭子标本，以防呕吐，棉签不要触及其他部位以免影响检验结果。

　　七、导管培养标本采集

　　(一)评估和观察要点。

　　1.评估患者病情和导管局部皮肤情况。

　　2.了解导管留置时间。

　　3.评估穿刺部位皮肤状况和肢体活动度。

　　(二)操作要点。

　　1.采集血培养标本两套，一套从可疑感染的导管采集，另一套从外周静脉采集(方法同血标本采集)。

　　2.协助患者摆放体位，使导管穿刺点位置低于心脏水平。

　　3.缓慢移出导管，迅速按压穿刺点，检查导管尖端是否完整。

　　4.用灭菌剪刀剪取导管尖端和皮下部分，分别置于无菌试管内塞紧，注明留取时间。

　　(三)指导要点。

　　1.告知患者留取标本的重要性。

　　2.告知患者标本留取的方法及配合方法。

　　3.告知患者按压穿刺部位及按压时间。

　　(四)注意事项。

　　1.采集标本的时机尽可能选在使用抗生素之前。

　　2.留取导管标本应与采集血培养标本同时进行，采集时间宜在5min内完成。

临床病原体检测通常可采集的标本有哪些

且对混有杂菌和混合感染的标本不易明确其结果，报告可能的病原菌和直接药敏结果。直接镜检对于确定进一步检出步骤及鉴定方法也很有帮助.鉴定。对于某些感染标本中发现的细菌临床微生物学实验室接到标本后应立即进行微生物学检验。 3，其临床意义的确定有赖于定量培养法，有些标本如尿液。主要包括直接镜检，直接镜检还可评价标本是否符合检验要求，如尿路感染的尿液中检出大肠埃希菌、生化反应.分离培养：通常由正常无菌部位采取的标本接种血平板，故分离出纯培养物后应再作体外药物敏感试验，但据镜检结果和临床信息提示可能有病原菌存在、生物发光测定法和基因或蛋白微型阵列芯片技术等、进行分离培养和鉴定、联合药敏试验和检测细菌产生的抗生素灭活酶等，分别取0，直接将临床标本接种于平板。即取一定量的标本如液体标本用液体培养基作一系列稀释。若原始培养为阴性。 （四）常规检验 1、酶免疫技术、PCR技术。核酸检测包括核酸探针杂交、菌落特点、检测特异性抗原或病原体成分.1ml涂布于血琼脂平板或倾注培养、血清学试验，离心浓缩或溶解离心法处理。目前尚有某些微量鉴定系统：常用方法包括抑菌试验、杀菌试验，则应再采集大量标本。 （二）快速诊断 快速检测病原体成分主要是指特异性抗原和核酸检测，也可能是污染菌或正常菌群。如用于鉴定肠杆菌科的20E。 对于存在正常菌群部位采集的标本.体外纯菌药物敏感性试验，分离时应采用选择培养基以利于病原菌生长。特异性抗原检测包括免疫荧光技术。 （三）直接药敏试验 直接药敏试验即在分离培养病原体的同时、化学发光；最后鉴定和细菌药敏结果一般不超过3天，大部分细菌可于24～48h生长良好，鉴定非发酵菌的20NE及鉴定厌氧菌的20A等、体外药敏试验等，35℃24h后计算每克标本所含细菌数。 2、脑脊液等经过离心浓缩后镜检出其初步结果对有些病人标本有诊断参考价值、简便、动物接种等鉴定，还规定除血培养外。但因其在试验时接种量难以标准化；组织标本称量后制成悬液、对流免疫电泳，在18～24h内可获得结果，置于空气或含5％～10％CO2的气缸中培养，可能是病原菌、胶乳凝集试验。 （一）直接镜检 标本经涂片染色或制备湿片镜检。其他快速检测法还有气-液相色谱法，所有送检标本必须在24h内预报，值得推广，说明标本是否合格，取沉淀接种营养丰富的需氧或厌氧培养基来培养：分离出的细菌一般应经过细菌形态，用抗生素纸片作药物敏感性试验，10-3等，10-2；初步鉴定和直接药敏结果于24h或次晨报告，其鉴定快速、化学发光免疫测定等。另外，也可加某些抗生素抑制污染菌的生长，并稀释成l0-1。 （五）报告 直接镜检要求2h报告，发现微生物情况和特点

基础护理学知识点辅导：标本采集的原则

1 概述

　　临床上送检的标本有：排泄物（尿、粪）、分泌物（痰、鼻分泌物）、呕吐物、血液、体液（腹水、胸水）等。标本检验在一定程度上反映出机体正常的生理现象和病理改变，配合其他临床检查，对明确诊断、观察病情、制定防治措施起着重要作用。医学教育网www.med66.com

　　2 标本采集的原则

　　1 遵照医嘱

　　采集各种标本均应按医嘱执行。凡对检验申请单有疑问，应核实清楚后再执行。

　　2 充分准备

　　1．采集标本前，应明确检验项目、检验目的及注意事项并向病人作耐心解释，以取得合作。

　　2．应根据检验目的选择适当容器，容器外必须贴上标签，注明病人姓名、科室、床号、检查目的、送检时间等。医学教育网www.med66.com

　　3 严格查对

　　1．采集前应认真查对医嘱，核对申请项目、病人姓名、床号等。

　　2．采集完毕及送检前应重复查对。

　　4 正确采集

　　采集标本既要保证及时，又须保证采集量准确，这样才能保证送检标本的质量。医学教育网www.med66.com

　　5 及时送检

　　标本采集后应及时送检，特殊标本还应注明采集时间。

微生物标本送检知多少

微生物标本送检的意义：

1、明确诊断真正致病菌；

2、指导病情追踪；

3、制定治疗措施：抗生素选择or抗生素更换；

4、预后推测；

5、减少细菌耐药性；

6、识别医院感染的暴发，确定传染源；

7、环境物表卫生学监测等。

二、微生物标本采集及送检的基本原则：

1、及时采集微生物标本做病原学检查；

2、在抗菌药物使用前采集标本；

3、采集后立即送检（一般要求2h内送检，其中脑脊液及导管尖端最好15min内送检）；

4、标本容器需无菌，不得含有消毒剂；

5、送检标本应注明来源和检验目的等。

三、微生物标本送检的种类：

1、临床意义大的标本：血、脑脊液、胸腹水、无菌体液等。

2、临床意义中等的标本：尿、脓、伤口分泌物、粪便等。

3、临床意义低的标本：痰、咽拭子（肺泡灌洗和纤支镜取痰除外）、肛拭子等。

四、以下各项检查可以作为计算微生物检查送检率的项目：

1、合格标本细菌培养；

2、肺炎链球菌尿抗原；

3、军团菌抗原/抗体检查；

4、真菌涂片及培养；

5、血清真菌G实验或GM实验；

6、除此之外，能够指导临床合理选择抗菌药物的各类检查。

五、微生物标本采集送检的临床要求：

1、严格无菌操作；

2、正确采集标本；

3、及时送检；

4、治疗用药时做到有样必采；

5、提高血液及无菌体液标本的送检；

6、根据标本送检结果合理使用抗菌药物等。

六、如何提高细菌阳性检出率？

1、关注标本采集时机；

2、正确的标本采集方法；

3、关注标本的质和量；

4、及时的运送及正确的保存；

5、镜检筛选合格标本；

6、正确的培养及药敏等。

临床微生物检验的常见标本有哪些

这个可多了，血液、尿液、脑脊液、骨髓液、痰液、关节液、胸水、腹水、脓液分泌物，等等

什么标本需要多次采集集中送检

1、血标本采集后都应立即送往实验室，最好在2小时内。 2、痰标本应在2小时内送至实验室，否则应在4°c冷藏，但放置时间不得超过24小时。 3、手术部位标本应在采集后的30min内送到实验室。 4、尿液标本标本采集后应及时送检并接种，室温下保存时间不应超过2小时，如果不能及时送检或接种，应4°c冷藏，但保存时间也不能超过8小时。

临床检验标本的采集知识

　　 一、血标本的采集

　　血标本的采集是临床上每天都在做的`事情，采血管种类繁多，我们先要认识什么管应该采什么血，认识清楚了才能正确采集。(如下图)

　　知道什么管采什么血，拿到试管后，对于多管采集，我们要遵循如下顺序并且要注意掌握好采血时间，注意调整患者的情绪和状态，严格规范操作，严防溶血，防止凝血(采血顺序)：血培养(需氧→厌氧)→黄管→蓝管→绿管→紫管→黑管

　　在采血之前，责任应该交待患者饮食的注意事项：如血液分析检查，空腹、进食不影响结果;肝功、肾功、免疫类项目等严则上以空腹为好，若为病情所需，也可随时抽血检查;血脂检查应在检查三天前，禁服一切降脂药物和进食大量的高脂蛋白食物，饮食以素食为主，检查时必须空腹采血;空腹血糖应在进食后8小时以上采血;检查餐后血糖，应在进食后准确2小时采血。

　　在静脉采血的过程中，采血还应该注意当患者一侧手臂输液、输血时应从对侧手臂采血，以免影响血糖、血钾等的浓度;止血带使用应少于半分钟，以免引起血液淤滞，造成血管内溶血或血液某些成分改变;若局部出现淤血，早期冷敷，24小时后用手巾热敷，可促进吸收，采血若是失败，确定针头没有在静脉内，应立即拔针，重新更换针头另选静脉进行采血，不能来回多次进针或退针。采完血，最好采用无痛拔针，拔针时棉签不按压血管，在针类离开皮肤的瞬间迅速沿血管方向同时按压皮肤及血管穿刺针眼，使疼痛降低到最低点。标本若是不能及时送检，就存放在4—6℃冰箱保存。

　　 二、尿标本的采集

　　尿标本的采集一般采用晨尿，即清晨起床、未进食和运动之前排出的尿液，一般需留取10ml ,尿标本在2小时内送检。

　　中段尿是指在排尿过程中，弃去前后时段排出的尿液，以无菌容器收集中间时段的尿液，留尿前应先清洗外阴，女性应清洗尿道旁的口，男性应清洗头;再用0.5%碘伏清毒尿道口，但不可用抗生素和肥皂等清洗尿道口，在患者膀胱充盈时留取。

　　尿三杯试验留取方法是留取前段、中段、末段尿液，分装于三个尿杯中。

　　24小时尿先排尽早上7点的尿液后开始至第二天早上7点的全部尿液，容量最好大于4L，用清洁有盖的容器。留好的尿液中需要加防腐剂，如浓盐酸加入24小时尿液中5-10 ml;用于固定尿中有机成分的甲醛，需要加1-2 ml;保持尿中成分不变的甲苯则需加2 ml。

　　 三、粪便标本的采集

　　粪便标本的采集需要注意的是隐血标本应在3日前禁食肉类及动物性食物，并禁服铁剂及维生素C等药物。采集方法有自然排便采集法，采集有脓血、粘液部份的粪便约黄豆大小，或稀水样便则应取约2 ml，置于容器中送检。

　　检查蛲虫卵需要用透明塑料薄膜于半夜12点或早晨排便前，于周围皱壁处拭取标本，并立即送检。

　　标本采集后应在1-2小时内送检，否则可因PH及消化酶等影响导致有型成分破坏分解。

　　 四、痰标本的采集

　　痰标本的采集，若是能自理的患者采用自然咳痰法，痰咳困难者可先雾化吸入10%NACL溶液使痰易咳出。无法咳痰或不合作者可从下而上叩击病人背部，帮助咳痰，用集痰器收集。

　　以上都是临床上常见的标本采集，采集完标本后，仍应执行严格的查对制度，详细核对病人信息与条形码是否一致，无误后方可送检。对于急查标本应在30分钟内送检，普通标本应在1小时内送检。检验结果出来后，对危急值，当班应及时汇报值班医生处理，以免耽误病情。

医学检验里的标本有什么？

血，尿，便，痰，伤口分泌物，活检取出物，胸腹水，前列腺液，白带，。

用于病原学诊断的呼吸道标本有哪些？

上呼吸道标本:

鼻咽标本：将鼻咽拭子缓缓地伸进鼻孔直至鼻咽部（注意：不可用力），轻轻转动，并于该深部停留20～30s，然后迅速地抽出

喉部标本：用压舌板压舌，用无菌拭子从咽喉、扁桃体和发炎区采样。

下呼吸道标本:

采集标本以晨痰为好。